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考馬斯亮藍法測蛋白含量的正確使用方法!

更新時間:2021-09-07      瀏覽次數(shù):8062

考馬斯亮藍法測蛋白含量的正確使用方法!

樣品可溶性蛋白質含量常常用于酶活性計算。此外,可溶性蛋白質含量也用于食品等質量分析。


在酸性溶液中,考馬斯亮藍G-250與蛋白質結合形成藍色復合物;該復合物在595nm處有最大吸收峰, 其顏色的深淺與蛋白質的濃度成正比。該方法靈敏度高,適合微量蛋白質分析。

使用所需設備:

產品組成:

試劑一:液體×1瓶,4℃保存。

標準品:液體×1瓶,4℃保存。

樣品中可溶性蛋白質提?。?/span>

液體樣品:澄清無色液體樣品可以直接測定。

組織樣品:準確稱取約0.1 g樣品,加1mL提取液(自備,根據(jù)需要選用酶提取緩沖液或者蒸餾水或者生理鹽水),冰浴勻漿,10000rpm,4℃離心10min,取上清,即待測液。(動物樣品常常需要稀釋)

吸光值測定:

1. 分光光度計預熱30 min以上,蒸餾水調零。

2. 空白管:取0.5mL EP管,加入40μL蒸餾水,250μL試劑一,混勻后室溫靜置10min,取200μL于微量玻璃比色皿/96孔板,于595nm比色,10~20min完成比色,記為A空白管。

3. 標準管:取0.5mL EP管,加入40μL標準液,250μL試劑一,混勻后室溫靜置10min,取200μL于微量玻璃比色皿/96孔板,于595nm比色,10~20min完成比色,記為A標準管。

4. 測定管:取0.5mL EP管,加入40μL待測液,250μL試劑一,混勻后室溫靜置10min,取200μL于微量玻璃比色皿/96孔板,于595nm比色,10~20min完成比色,記為A測定管。

蛋白質含量計算公式:

C待測(µg/m L)= C標準管×(A測定管-A空白管)÷(A標準管-A空白管)

                =50×(A測定管-A空白管)÷(A標準管-A空白管)

C標準管:標準品蛋白質濃度,50μg/mL。

注意事項:

1.加考馬斯亮藍后,在10~20min內吸光值相對較穩(wěn)定,因此須在10~20min完成比色。

2.不宜用石英比色皿,可用玻璃或塑料比色皿,測完成后立即用95%乙醇沖洗。

3.測定前用1~2個樣做預實驗,確保蛋白濃度在0~100µg/ml范圍內,否則需要做相應稀釋。







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